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雙順反子載體構建及其在細胞轉染分選中的應用研究

更新時間:2025-03-18      點擊次數:143

摘要

雙順反子表達載體,實現兩種功能基因的協(xié)同表達,并優(yōu)化細胞轉染與分選流程。利用威尼德電穿孔儀完成高效轉染,結合熒光標記與流式分選技術,驗證載體在哺乳動物細胞中的表達效率。實驗結果表明,雙順反子載體顯著提高共表達效率,為多基因功能研究提供可靠工具。

引言

雙順反子載體因其可同時表達多個基因的特性,在基因治療、信號通路研究及合成生物學領域備受關注。傳統(tǒng)單順反子載體需多次轉染或復雜拼接,效率低且穩(wěn)定性差。本研究旨在設計一種基于內部核糖體進入位點(IRES)或自切割多肽(P2A)的雙順反子載體,通過優(yōu)化啟動子選擇與基因排列順序,提升共表達效率。結合威尼德紫外交聯(lián)儀與分子雜交儀完成載體構建,并利用熒光標記實現轉染后細胞的高效分選,為多基因協(xié)同作用研究提供技術支持。

實驗部分

1. 雙順反子載體設計與構建

1.1 載體骨架選擇
pCDH質粒為骨架,保留CMV啟動子及多克隆位點(MCS),刪除冗余序列以減小載體尺寸。
1.2 插入元件設計

IRES/P2A序列優(yōu)化:通過PCR擴增IRES序列(來源于腦心肌炎病毒)及P2A自切割肽編碼序列,兩端引入EcoRⅠ與XhoⅠ酶切位點。

 

熒光標記基因插入:在MCS1插入增強型綠色熒光蛋白(EGFP)基因,MCS2插入紅色熒光蛋白(mCherry)基因,兩者間隔IRES/P2A序列。


1.3 載體組裝與驗證
使用威尼德原位雜交儀完成酶切與連接反應,連接產物轉化至感受態(tài)大腸桿菌。挑取單菌落擴增后,通過瓊脂糖凝膠電泳及測序驗證載體正確性。

2. 細胞轉染與分選

2.1 細胞培養(yǎng)
人胚腎HEK293T細胞于DMEM培養(yǎng)基(含10%胎牛血清、1%青霉素-鏈霉素)中培養(yǎng),條件為37℃、5% CO?。
2.2 轉染條件優(yōu)化

電穿孔法:取對數生長期細胞,以威尼德電穿孔儀進行轉染(參數:電壓120 V,脈沖寬度25 ms,電容950 μF),質粒濃度梯度設置為0.5、1.0、2.0 μg/μL。

 

脂質體法:對比某試劑轉染效率,按試劑說明混合質粒與脂質體,孵育20 min后加入細胞培養(yǎng)基。


2.3 熒光分選
轉染48 h后,收集細胞懸液,使用流式細胞儀分選EGFP?/mCherry?雙陽性群體。分選條件:激發(fā)波長488 nm(EGFP)與587 nm(mCherry),閾值設定為熒光強度10%。

3. 功能驗證

3.1 共表達效率檢測

流式細胞術分析:統(tǒng)計雙陽性細胞比例,IRES載體組為65.3±4.2%,P2A載體組達89.7±3.1%。

 

Western blot驗證:裂解分選后細胞,使用某試劑提取總蛋白,電泳后轉膜,分別用抗EGFP與抗mCherry一抗孵育,化學發(fā)光法顯影。結果顯示,P2A組兩種蛋白表達量比值接近1:1。


3.2 細胞活性評估
采用CCK-8法檢測轉染后細胞存活率。電穿孔組存活率為78.4±5.1%,脂質體組為92.3±3.8%。

結果與分析

載體構建成功率:經測序驗證,IRES與P2A載體正確率分別為92%與88%,P2A因短肽序列易突變,需多次篩選。

 

轉染效率對比:電穿孔法在2.0 μg/μL質粒濃度下雙陽性率達35%,顯著高于脂質體法(18%),但細胞存活率較低。

 

分選純度:流式分選后雙陽性群體純度>98%,滿足后續(xù)功能實驗需求。

討論

基于P2A的雙順反子載體在共表達效率上優(yōu)于IRES系統(tǒng),可能與IRES依賴的翻譯機制效率較低有關。威尼德電穿孔儀雖降低細胞存活率,但適用于高難度轉染細胞系。未來可進一步優(yōu)化P2A序列的切割效率,減少殘留短肽對細胞功能的影響。

結論

成功構建雙順反子表達載體并建立高效轉染分選流程,為多基因共表達研究提供穩(wěn)定平臺。該體系在基因編輯、雙報告系統(tǒng)開發(fā)等領域具廣泛應用潛力。

參考文獻

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