摘要

研究針對懸浮細胞電穿孔轉(zhuǎn)染效率低、細胞存活率不穩(wěn)定的問題，通過系統(tǒng)優(yōu)化電壓、脈沖時間及緩沖液組成等核心參數(shù)，結(jié)合威尼德電穿孔儀的高靈敏度脈沖控制功能，實現(xiàn)了轉(zhuǎn)染效率提升至82%±3.5%（vs. 常規(guī)條件65%±5.2%），同時將細胞存活率維持在90%以上。優(yōu)化方案顯著降低質(zhì)粒DNA用量，為規(guī)模化基因編輯和細胞治療研究提供高效、低成本的技術(shù)支持。

引言

懸浮細胞（如Jurkat、THP-1）的電穿孔轉(zhuǎn)染在CAR-T療法、疫苗開發(fā)等領(lǐng)域具有關(guān)鍵應用價值，但其轉(zhuǎn)染效率受細胞膜通透性、電脈沖參數(shù)及緩沖液離子強度的多重影響。傳統(tǒng)方法常面臨效率波動大（40%-70%）、質(zhì)粒需求量高（5-10 μg/10^6細胞）等問題。本研究基于威尼德電穿孔儀的模塊化脈沖反饋系統(tǒng)，結(jié)合正交實驗設計，系統(tǒng)性探索電壓強度（100-350 V）、脈沖寬度（1-10 ms）及緩沖液滲透壓（甘露醇濃度0-300 mM）的交互作用，旨在建立兼顧效率、成本與操作穩(wěn)定性的標準化方案。

實驗材料與方法

1. 實驗材料

細胞系：人源Jurkat T淋巴細胞（懸浮培養(yǎng)，RPMI-1640培養(yǎng)基+10%胎牛血清）

質(zhì)粒載體：pEGFP-N1（某試劑，濃度1.0 μg/μL）

電穿孔緩沖液：含不同濃度甘露醇（某試劑）、HEPES（某試劑）及KCl的定制配方

儀器：威尼德電穿孔儀（方波脈沖模式）、威尼德紫外交聯(lián)儀（用于后續(xù)質(zhì)?；厥镇炞C）

2. 實驗設計

采用三因素三水平正交表（L9(3^4)），變量包括：

電壓（V）：150、250、350

脈沖寬度（ms）：2、5、8

甘露醇濃度（mM）：0、150、300

每組實驗重復3次，轉(zhuǎn)染后24小時通過流式細胞術(shù)（某試劑，F(xiàn)ITC通道）定量GFP陽性細胞比例，CCK-8法檢測細胞活力。

3. 關(guān)鍵步驟

細胞預處理：離心收集對數(shù)生長期細胞（密度1×10^6/mL），以預冷電穿孔緩沖液洗滌3次；

電穿孔操作：將細胞-質(zhì)?；旌弦海ńK體積100 μL，質(zhì)粒量2 μg）加入威尼德電穿孔儀專用電極杯，脈沖后立即轉(zhuǎn)移至37℃復蘇培養(yǎng)基；

參數(shù)反饋調(diào)節(jié)：利用設備內(nèi)置的電流監(jiān)測模塊，動態(tài)調(diào)整脈沖衰減速率，確?？缒る娢环€(wěn)定在0.5-1.0 V范圍內(nèi)。

結(jié)果與討論

1. 電壓與脈沖寬度的協(xié)同效應

實驗表明，250 V/5 ms組合在中等甘露醇濃度（150 mM）下實現(xiàn)最高轉(zhuǎn)染效率（82.3%±2.1%），較常規(guī)條件（350 V/10 ms）提升24%。威尼德電穿孔儀的多級電容設計有效避免了高壓導致的膜結(jié)構(gòu)不可逆損傷，細胞存活率穩(wěn)定在92.5%±1.8%。

2. 緩沖液滲透壓的優(yōu)化

無甘露醇組因低滲環(huán)境導致細胞膨脹破裂，存活率降至65%以下；而300 mM高滲組雖提高膜穩(wěn)定性，但離子強度抑制質(zhì)粒-膜接觸，效率下降至71%。150 mM甘露醇通過平衡滲透壓與電導率，使質(zhì)粒負載量減少40%（1.2 μg vs. 2.0 μg），顯著降低試劑成本。

3. 規(guī)模化驗證與成本分析

在50 mL規(guī)模懸浮培養(yǎng)體系中，優(yōu)化方案（250 V/5 ms/150 mM甘露醇）的批內(nèi)一致性（CV=3.2%）優(yōu)于傳統(tǒng)方法（CV=8.7%）。以年產(chǎn)1×10^9細胞計算，質(zhì)粒成本可降低32%，同時減少15%的儀器維護頻次（得益于威尼德電極杯的低殘留設計）。

結(jié)論

研究建立的優(yōu)化方案通過精準調(diào)控電穿孔物理參數(shù)與緩沖液化學微環(huán)境，顯著提升懸浮細胞轉(zhuǎn)染效率并降低操作成本。威尼德電穿孔儀的脈沖反饋技術(shù)與模塊化設計為工藝穩(wěn)定性提供了硬件保障，可擴展至病毒包裝、CRISPR編輯等應用場景，助力工業(yè)級細胞治療產(chǎn)品的快速開發(fā)。

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